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您到現(xiàn)在才知道BIM試劑盒實驗前如何做好優(yōu)化?

點擊次數(shù)：14798 發(fā)布時間：2016/11/15 10:21:59

BIM試劑盒包被條件的優(yōu)化：
1、包被液的挑選：通常常用的是pH9.6的碳酸鹽緩沖液，假如包被的抗原在堿性條件下不穩(wěn)定的話，也可以運用pH7.2的磷酸鹽緩沖液。
2、包被濃度的挑選：包被的*適濃度隨固相載體和包被物的性質(zhì)改變，通常蛋白質(zhì)的包被濃度為1-5ug/ml，要清晰對于特定包被抗原的*適包被濃度需求通過試驗來斷定。
3、包被溫度的挑選：通常是4-8度條件下放置一個黑夜或者37度保溫2小時，咱們強烈建議4-8度條件下包被，有利于蛋白活性的堅持。
4、包被抗原的挑選：可分為天然蛋白、重組蛋白和小分子抗原三大類。小分子抗原比如多肽以及一些小分子有機化合物，因為分子量太小，通常難于直接吸附在酶標板上，通常都先使其與無關(guān)蛋白質(zhì)，比如BSA等偶聯(lián)，偶聯(lián)物吸附于固相載體上。
BIM試劑盒加樣的優(yōu)化：
在這一進程中，通常狀況下有三次加樣，它們分別是加標本，加酶聯(lián)系物，加底物。凍結(jié)血清融解后，蛋白質(zhì)部分濃縮，散布不均，應(yīng)充沛混勻宜輕緩，避免氣泡，可上下倒置混和，不要在混勻器上強烈振動。制備血漿標本需借助于抗凝劑，而血清標本只要待血清天然凝固、縮短后即可獲得。也可在板孔中參加稀釋液，再在其參加血清標本，然后在微型震動器上震動1分鐘以保證混和。通常說來，在5天內(nèi)測定的血清標本可放置于4℃，超越一星期測定的需低溫冰存。